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纳米银和银离子对陆生植物拟南芥生长毒性的比较研究外文翻译资料

 2023-02-23 03:02  

英语原文共 10 页,剩余内容已隐藏,支付完成后下载完整资料


纳米银和银离子对陆生植物拟南芥生长毒性的比较研究

摘要

银纳米粒子(AgNPs)是应用最广泛的纳米材料之一,但AgNP在陆地植物中的毒性机制尚不清楚。我们从生理、超微结构和分子水平比较了AgNPs和Ag 对拟南芥的毒性作用。AgNPs不影响种子萌发;但它们对根伸长的抑制作用强于Ag 。透射电镜和金属含量分析结果表明,AgNPs可在叶片中积累。这些吸收的AgNPs破坏了类囊体膜结构,降低了叶绿素含量,从而抑制了植物的生长。相比之下,银离子处理的幼苗中,少量的Ag离子被幼苗吸收,且不像AgNPs那样明显地影响叶绿体结构和其他金属离子的吸收。与Ag 处理相比,AgNPs可以改变抗氧化和水通道蛋白相关基因的转录,说明AgNPs改变了氧化-抗氧化系统之间的平衡,也影响了植物体内水和其他小分子之间的稳定性。所有从生理、超微结构和分子水平的数据表明,AgNPs的毒性大于Ag 。

背景介绍

纳米粒子(NPs),也称为颗粒纳米材料,被定义为小于100nm的粒子。纳米粒子的小尺寸、结构和表面特征赋予其新的物理和化学性质,而同一材料的块状粒子并不共享这些性质(Stampoulis et al., 2009)。由于其特殊的性质,NPs被用于各种应用,从化妆品到医学等方面。纳米技术相关产品的年价值预计将在2015年达到1万亿美元(Roco, 2005)。NPs的广泛使用将通过大气排放、废水、农业和生产/运输过程中的意外排放造成环境污染(Colvin, 2003)。在过去的几年里,NPs的毒理学已经在许多物种中得到了研究,包括细菌、藻类、无脊椎动物(线虫和甲壳类动物)、鱼类和脊椎动物(大鼠与人类)(Stampoulis et al., 2009)。NPs可以影响生物体,被细菌、植物、动物和人类细胞吸收(Khodakovskaya et al.,2011)。关于NPs(TiO2、ZnO、Mg、Al、Pd、Cu、Si、C60富勒烯和多壁碳纳米管)在高等植物中的毒性研究表明,NPs对生长有负面影响。例如,氧化铜纳米颗粒通过诱导过量ROS(活性氧物质)的形成,强烈抑制草地植物和蓝藻的生长并诱导其DNA损伤(Wang et al., 2011;Atha et al., 2012)。只有少数报告表明对植物生长有积极影响。正如Khodakovskaya et al(2011)报道,50mu;g /毫升的碳纳米管能通过激活许多压力相关基因的转录,比如编码水通道和热休克蛋白的基因,从而增强番茄生物质(新鲜和干植物)。纳米银(AgNPs)是消费品库存中最重要的纳米材料之一,因为它具有已知的抗菌特性,在个人护理产品、食品服务、建筑材料、医疗器械和纺织品中都很有用(Park et al., 2010)。目前,AgNPs被用于250多种产品中(Fabrega et al., 2011)。随着使用量的增加,污染水中AgNPs的最高浓度记录为145 mg/L (Kaegi et al., 2010)。许多报告表明,AgNPs对细菌、鱼类、藻类和其他生物具有高度毒性(Fabrega et al.,2009;Griffitt等,2008;Miao et al.,2009;纳瓦罗等人,2008)。在探讨AgNP毒性机制的同时,Navarro等人(2008年)指出,AgNPs抑制淡水藻类衣藻的光系统II量子产率。其他研究人员注意到,AgNPs通过破坏不同阶段的细胞分裂和破坏根皮层细胞、表皮和根冠来抑制植物生长(Kumari et al.,2009;Stampoulis等人,2009)。然而,由于研究的数量有限,仍然很难完全理解AgNP在陆地植物中的毒性机制。鉴于商业AgNPs产量的增加可能会对生态系统产生潜在的负面影响,我们必须拓宽关于AgNPs毒性的知识,以预测与这些材料相关的环境和人类健康风险。因此,本研究的目的是通过比较AgNPs与Ag 的毒性,阐明AgNPs对拟南芥生长、细胞超微结构和抗氧化系统的毒性作用。

1材料和方法

1.1培养条件

用75%乙醇和1%次氯酸钠(V/V)对哥伦比亚(Col-0)生态型拟南芥种子进行灭菌处理。灭菌后的种子在4℃下春化2天,然后在含有或不含不同浓度AgNPs的Murashige和Skoog琼脂板(含30 g/L蔗糖和0.8%琼脂)上萌发。AgNPs购自上海沪正纳米技术有限公司,根据制造商的数据和我们的透射电镜(TEM)的检测结果,颗粒直径约为10纳米(图S1)。加入培养基后,通过超声振动将AgNPs分散。对于阳性对照,我们使用相同浓度的Ag (来自AgNO3)进行实验,来比较AgNPs和Ag 的毒性。拟南芥在光照强度为300mu;mol/(m2·sec)的12小时光/暗循环下,在(25plusmn;0.5)°C的培养室中生长。每个处理准备三份生物重复,每个重复至少包含10个植株,1周和2周后获得样品进行形态学、生理学和基因表达分析。

1.2植物组织中叶绿素、花青素和金属含量分析

根据Inskeep和Bloom(1985)的方法,采用N,N-二甲基甲酰胺提取拟南芥的叶绿素。利用分光光度计在647和664.5 nm处获得吸光度值,根据Inskeep和Bloom(1985)报道的公式计算叶绿素a (Chl-a)、叶绿素b (Chl-b)和总叶绿素(total - chl)含量。处理组和对照组的叶片(约50毫克)被磨成粉末,在300mu;L的HCl:MeOH(1:99,V/V)中孵育一夜,温度为4°C。随后,加入200mu;L的水和500mu;L的氯仿,并将混合物离心分离叶绿素。上清液可用于测量花青素,如Yoo等人所示(2011)。为了测量拟南芥中的金属含量,收集了对照组和处理组(暴露于2mg/L的AgNPs和Ag中两周)的幼苗,并在硝酸中干燥和消化。随后,用电感耦合等离子体质谱系统(ICP-MS,Agilent7500a,美国)将样品稀释到Milli-Q水中进行分析。

1.3电子显微镜分析

对照组和处理组的样品(暴露于3 mg/L AgNPs和Ag 两周)根据我们之前的报告进行固定和嵌入(Qian et al., 2008)。在TEM分析之前,将固定的植物组织用超微体(Leica Reichert Ultracut S, Vienna, Austria)切成超薄切片(70-90 nm),用乙酸铀酰和柠檬酸铅染色。然后用JEM-1230显微镜观察超薄切片(JEOL Ltd.,日本东京)。

1.4 RNA提取、逆转录和实时PCR分析

用RNA提取试剂盒(Sangon公司,中国上海)收获了拟南芥幼苗,并在液氮中研磨以提取RNA。在260和280n m处用分光光度法测定RNA的数量和质量。用1%琼脂糖甲醛凝胶电泳检测RNA的完整性。然后使用反向转录酶试剂盒(Toyobo,东京,日本)将高质量的RNA反向转录成cDNA。使用Eppendorf MasterCyclerep RealPlex4(Wesseling-Berzdorf,德国)进行实时PCR,并且PCR protocol是按照我们之前的报告(钱等人,2011年)进行的。以前设计的引物对(钱等人,2011年)被用来扩增22个抗氧化基因,包括3个Cu/ZnSO D基因(CSD1-3)、1个MnSO D基因(MSD1)、3个Fe-SO D基因(FSD1-3), 一个CAT基因(CAT)、五个抗坏血酸过氧化物酶基因(APX1-5)和八个谷胱甘肽过氧化物酶基因(G PX1-8)。同时选择6个水通道蛋白基因:SIP1;1,SIP1;2,TIP1;1,PIP1;2,PIP2;1,PIP2;2。

1.5数据分析

结果表示为均值(SEM)的平均plusmn;标准误差。使用Studentrsquo;s t test与相应的对照数据进行比较,并使用StatView5.0对数据进行评估。当p小于0.05或0.01时,有统计学显着性差异。

2结果

2.1 AgNPs和Ag对种子萌发和幼苗生长的影响

拟南芥种子在Murashige和Skoog琼脂培养基上培养数天后开始发芽生长,纳米银处理组、Ag 处理组和对照组之间的发芽差异无统计学意义(数据未显示)。然而,随着幼苗的生长,AgNPs和Ag对根长和鲜重有明显的抑制作用,AgNPs比Ag具有更强的抑制作用。图1显示AgNPs和Ag以浓度依赖性的方式对根伸长产生了显著的抑制作用。0.5 mg/L AgNPs处理组和3.0 mg/L AgNPs处理组的根长分别为对照组的75.4%和34.5%;两周后分别为91.67%和58.6%。暴露在0.2mg/L的AgNPs中不影响根伸长。只有最高浓度的Ag 在暴露一周后对根伸长有显著抑制作用,根长下降到对照的64.5%。然而,在暴露两周后,它不再抑制根伸长,而最低浓度的Ag (0.2mg/L)则略微增加了根伸长。虽然AgNPs抑制根伸长,但它们引起根数的显著增加。暴露两周后,对照组和处理组的幼苗根系伸长;然而,0.5和3.0mg/L AgNPs处理组的伸长率慢于对照组和Ag 处理组。相应地,随着AgNPs浓度的升高,拟南芥的鲜重显著降低。在3毫克/升的AgNPs暴露一周和两周后,幼苗的鲜重分别降至对照组的57.3%和46.1%,暴露于0.2和0.5 mg/L AgNPs不受影响。三种浓度的Ag 均不影响幼苗暴露一周和两周后的新鲜重量(表1)。

图1 暴露于Ag 和AgNPs一周及两周后,拟南芥根系伸长的相对抑制率。相对于对照组,*和**分别代表p<0.5和p<0.01时的差异。

表1 AgNPs和Ag 处理后叶片鲜重、叶绿素和花青素含量的变化

数据以均数plusmn;SEM表示;相对于对照组,*和**分别代表p<0.5和p<0.01时的差异。Fw表示鲜重。

2.2 AgNPs和Ag 对植物组织叶绿素、花青素和金属含量的影响

叶绿素是反映植物生长状态的重要生物标志物。从表1中可以看出,AgNPs和Ag 均可使拟南芥幼苗2周后的cl -a、cl -b和总chl含量下降。0.5 mg/L和3.0 mg/L的AgNPs显著降低了两组中Chl-a的含量,降至对照组的60.9%,但相同浓度的Ag 使Chl-a的含量降至对照组的约78.1%。在0.2mg/L时,AgNPs和Ag均未显著改变Chl-a含量。高浓度的AgNPs和Ag(0.5和3.0mg/L)也显著降低了Chl-b的含量,Ag 比AgNPs具有更强的抑制作用。AgNPs对总Chl含量的影响与它们对Chl-a和Chl-b的影响相似。0.5 mg/L和3.0 mg/L的AgNPs显著降低了总chl含量,分别为62.4%和63.5%;而0.5 mg/L和3.0 mg/L的Ag 仅使总chl含量分别降至对照组的78.8%和81.2%。

拟南芥植物在AgNPs和Ag 中的暴露导致不同程度的花青素积累。暴露在0.5和3.0毫克/升的AgNPs后,花青素含量分别增加到对照的2.81倍和4.2倍;暴露在0.5毫克/升Ag和3.0毫克/升Ag 的一周后,也增加到对照的2.05倍和2.29倍(表1)。然而,在0.2mg/L的AgNPs和Ag 中,花青素含量没有明显变化。花青素含量随暴露时间的增加而逐渐增加,在接触0.5和3.0mg/L的AgNPs后,分别达到对照的3.41倍和5.99倍;暴露在0.5和3.0mg/L Ag 两周后,它也增加到对照的2.46倍和3.8倍。

为了收获足够的材料来分析AgNPs和Ag 对幼苗金属离子吸光度的影响,我们将暴露浓度降低到2.0mg/L(表2)。对照组叶片中的银含量极低,可能表示机器的检测阈值。然而,AgNP处理植物叶片中的Ag含量达到3137.63mu;g/g,高于Ag 处理植物叶片中的Ag 含量,其银含量积累仅为804.73mu;g/g。在AgNPs处理的组中,叶片中K、Fe2和Zn2显著降低,分别为对照组的71.4%、50.3%和49%。用AgNPs处理后,Na、Mg2和Ca2含量略有下降,但降幅不明显。所有这些金属离子的吸收不受Ag 处理的影响。

表2 3 mg/L AgNPs和Ag 处理2周后幼苗(叶片)金属离子含量的变化

数据以均数plusmn;SEM表示;不同字母表示差异有统计学意义(p lt; 0.05)。

2.3AgNPs和Ag 对叶片细胞超微结构的影响

经3.0 mg/L AgNPs和Ag 处理的植物叶片透射电镜图像如图2所示。我们观察到AgNPs和Ag 处理后细胞体积减小,而AgNPs处理后叶绿体略变扁平(图2a-c)。在AgNPs处理后,基粒片层变薄且模糊,类囊体膜之间的距离变宽(图2e)。在Ag 处理后,叶绿体的结构没有明显变化,除了基粒片层与对照相比变得稍微模糊(图2f)。此外,AgNPs处理后叶绿体中的嗜盐小球粒增多(图2e),但Ag 处理后没有变化(图2f),只有AgNPs处理组细胞间隙中有大量的电子致密沉积(图2e, h, j)。这些黑色的沉积物是AgNPs,表明AgNPs可以被根吸收并转移到叶子上。

图2 用透射电镜观察经AgNPs和Ag 处理2周后拟南芥叶绿体的变化。(a)对照组中的叶肉细胞结构;(b) AgNPs处理样品中的叶肉细胞结构;(c)Ag 处理样品中的叶肉细胞结构;(d)和(g)对照中的基粒片层;(e)和(h) AgNPs处理样品中的基粒片层;(f)和(i) Ag 处理样品中的基粒片层;(j)和(k) 在(h)中矩形内面积的放大图像。C:细胞,CP:叶绿体,thy:类囊体,OG:嗜

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